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細胞培養(yǎng):是指細胞在體外的培養(yǎng)技術(shù),即在無菌條件下,從機體中取出組織或細胞,模擬機體內(nèi)正常生理狀態(tài)下生存的基本條件,讓它在培養(yǎng)皿中繼續(xù)生存、生長和繁殖的方法。通過細胞培養(yǎng)我們可以獲得大量的、性狀相同的細胞,以便于研究細胞的形態(tài)結(jié)構(gòu)、化學(xué)組成及功能和機制。
細胞真的很脆弱,就像小嬰兒一樣,需要你無微不至的關(guān)懷
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在還沒有開始培養(yǎng)它們之前,你就需要做好這些準備。
包括耗材的處理、試劑的配置,無菌檢驗等等。
玻璃器皿的清洗,對于玻璃器皿(細胞瓶、裝營養(yǎng)液的瓶子、小青霉素瓶等)要用洗衣粉刷干凈(注意死角),然后沖干凈。用酸液浸泡 24 h 以上,之后用清水沖洗數(shù)遍,除去殘留酸液。瓶子之類,沖洗過程要使勁搖晃。
試劑配置,細胞培養(yǎng)用的液體一般使用雙蒸以上的水即可。并注意 pH 值的調(diào)節(jié)。
無菌檢驗,主要采用過濾除菌:如胰酶、抗生素、G-418 溶液、各類培養(yǎng)基、丙酮酸鈉、谷氨酰胺等。有些可以采用高壓滅菌:如 PBS、D-Hank's等。
不同細胞對培養(yǎng)基的要求是不同的,要根據(jù)自己的細胞要求使用。
至于實驗操作,腦子里時刻提醒自己“無菌”;
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實驗進行前,超凈臺以紫外燈照射 30 分鐘滅菌,以 70 % ethanol 擦拭無菌操作臺面,并開啟超凈工作臺風(fēng)扇運轉(zhuǎn)數(shù)分鐘后,才開始實驗操作。
每次操作只處理一株細胞株,避免細胞間交叉污染。
實驗完畢后,將實驗物品帶出工作臺,再次以 70 % ethanol 擦拭無菌操作臺面。實驗用品以 70% 乙醇擦拭后才帶入無菌操作臺內(nèi)。實驗操作應(yīng)在中央無菌區(qū)域,一般不要再邊緣區(qū)域操作。
你最好做到每天都去探望探望它們,看看他們的成長情況
1、檢查培養(yǎng)液顏色與透明度的變化,顏色變黃,說明PH值下降;變紅或紫紅色,說明PH值上升,細胞生長停滯、死亡,一般生長穩(wěn)定的細胞2-3天換液一次,生長緩慢的細胞可3-4天換液一次。
2、觀察細胞生長狀態(tài),細胞長滿瓶底的80%,應(yīng)及時傳代。
3、觀察細胞形態(tài)變化,細胞透明度大、折光性強、輪廓清晰為佳。
4、注意微生物污染,常常出現(xiàn)培養(yǎng)液混濁,液體內(nèi)漂菌絲或細胞菌,不僅僅指微生物,包括所有混入培養(yǎng)環(huán)境中的細胞生存有害的成分和造成細胞不純的異物及細胞。
如果你培養(yǎng)的細胞被污染了,無非是下面幾個污染途徑:
1、空氣是微生物傳播的最主要途徑,操作時盡量避免說話、咳嗽、打噴嚏;
2、使用的培養(yǎng)器械及器皿清洗消毒不徹底;
3、培養(yǎng)兩種以上細胞時,操作不規(guī)范,可能導(dǎo)致細胞交叉污染;
4、血清有問題,可能血清在生產(chǎn)時就已經(jīng)被支原體或病毒污染;
5、原代培養(yǎng)的污染多數(shù)來源于組織樣本。
注意問題:操作全過程要求無菌、胰酶消化時間要適度、吹打細胞時用力要適度,盡量減少氣泡
整體課題協(xié)作
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